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          染色凋亡試劑盒使用過程

          更新時間:2021-05-06瀏覽:970次

            染色凋亡試劑盒貼壁細胞:
            A.取潔凈蓋玻片在70%乙醇中浸泡5分鐘或更長時間,無菌超凈臺內吹干或用無菌的PBS或0.9%NaCl等溶液洗滌三遍,再用細胞培養液洗滌一遍。將蓋玻片置于六孔板內,種入細胞培養過夜,使約為50%-80%滿。
            B.刺激細胞發生凋亡后,吸盡培養液,加入0.5ml固定液,固定10分鐘或更長時間(可4℃過夜)。
            C.去固定液,用PBS或0.9%NaCl洗兩遍,每次3分鐘,吸盡液體。洗滌時宜用搖床,或手動晃動。
            D.加入0.5ml Hoechst33258染色液,染色5分鐘。也宜用搖床,或手動晃動數次。
            E.去染色液,用PBS或0.9%NaC1洗兩遍,每次3分鐘,吸盡液體。洗滌時宜用搖床,或手動晃動。
            F.滴一滴抗熒光淬滅封片液于載玻片上,蓋上貼有細胞的蓋玻片,讓細胞接觸封片液,盡量避免氣泡。
            G.熒光顯微鏡可檢測到呈藍色的細胞核。激發波長350nm左右,發射波長460mm左右。
            染色凋亡試劑盒懸浮細胞:
            A.離心收集細胞樣品于1.5ml離心管內,加入0.5ml固定液,緩緩懸起細胞,固定10分鐘或更長時間(可4℃過夜)。
            B.離心去固定液,用PBS或0.9%NaCl洗兩遍,每次3分鐘。洗滌期間手動晃動數次。
            C.離心后吸去大部分液體保留約50ul液體,再緩緩懸起細胞,滴加至載玻片上,盡量使細胞分布均勻。
            D.稍晾干,使細胞貼在載玻片上不易隨液體流動。
            E.均勻滴上0.5ml Hoechst33258染色液,染色5分鐘。用吸水紙從邊緣吸去液體,微晾干。
            F.去染色液,用PBS或0.9%NaCl洗兩遍,每次3分鐘,吸盡液體。洗滌時宜用搖床,或手動晃動。
            G滴一滴抗熒光淬滅封片液于載玻片上,蓋上一潔凈的蓋玻片,盡量避免氣泡。
            H.熒光顯微鏡可檢測到呈藍色的細胞核。激發波長350nm左右,發射波長460mm左右。

           

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